Введение. Свет представляет собой важнейший физический фактор внешней среды, оказывающий рефлекторное воздействие на различные функциональные системы организма. Наряду с этим он является сигнальным раздражителем и обеспечивает запуск и регуляцию суточных ритмов активности, выделения гормонов, обмена веществ и водно-солевого баланса в крови и тканях организма [1].
По мнению некоторых авторов, свет – самый сильный и эффективный стимулятор [1, 2], но известно, что глаз, рецептируя световую информацию, трансформирует ее в нервный раздражитель, который по системе нервных проводников передается в гипофиз, а он в свою очередь функционирует под сильным контролем гипоталамуса, где имеются дифференцированные ядра, которые ответственны за регуляцию синтеза специфических метаболитов – нейросекреторов, обладающих гормоноподобным действием, так называемых релизинг-факторов [2].
В настоящее время в промышленном птицеводстве используются самые разнообразные режимы освещения (постоянные, дифференцированные, прерывистые, переменные и ритмично-варьирующие), позволяющие поддерживать продуктивность птицы на достаточно высоком уровне [3]. В понятие режима освещения входят в логической последовательности: спектральный состав светового потока источников освещения, уровень освещенности и периодические чередования света и темноты.
Все используемые режимы, по чередованию света и темноты, можно разделить на несколько групп. Это постоянные режимы, в которых сутки разбиваются на два периода, с определенным соотношением свет:темнота (С:Т), постоянные режимы, с изменением продолжительности фотопериода течение времени выращивания и содержания птицы. В последнее время более широкое применение находят режимы прерывистого освещения, в которых смена С:Т проходит более 2-х раз в сутки. Они также могут быть с постоянным и, изменяющимся со временем, соотношением С:Т. Используются импульсное (на фоне принятого режима подаются короткие “импульсы” света, с довольно высокой освещенностью) и варьирующие (уровень освещенности изменяется несколько раз в сутки).
B продуктивном птицеводстве эффективность применения разных световых программ может быть рассмотрена, в основном, с двух точек зрения. Это влияние их на репродуктивную функцию птиц или воздействие на увеличение живой массы. Именно эти два показателя имеют основное прикладное значение, и в то же время, являются интегрирующими по отношению к другим (сохранность, устойчивость к заболеваниям, оплата корма продукцией и др.), тоже имеющим значение в оценке эффективности производства.
Материал и методы исследования. Объектом для исследований служили цыплята-бройлеры кросса «Кооб-500». В опыте изучалось 4 световых режима, предусматривающих контрольную группу со световым режимом 23 часа света и 1 час темноты (23С:1Т), что соответствует световому режиму Витебской бройлерной птицефабрики и 3 опытных группы со световыми режимами, соответственно 3С:1Т; 2С:1Т; 1С:1Т с одинаковым освещением в 15 лк для всех цыплят опытных групп с суточного возраста и до убоя.
Результаты исследования. В исследованиях установлено, что изменение условий внешней среды, при выращивании бройлеров выразившееся в изменении световых режимов в птичнике, проявилось в улучшении основных продуктивных качеств бройлеров. Причиной этого является изменение физиологического состояния птицы. В опытах зафиксирован ряд физиологических и биохимических параметров контрольной и опытных групп, которые в определенной мере характеризовали физиологическое состояние птицы.
Так как кровь наиболее полно отражает разнообразные биохимические и физиологические процессы, происходящие в организме, то величину и скорость обменных процессов можно косвенно определить по изменению количества метаболитов крови. Результаты исследования морфологического состава крови представлены в таблице 1.
Таблица 1 – Морфологические показатели крови цыплят-бройлеров в зависимости от световых режимов
Показатели |
Контрольная (23С:1Т) |
I группа (3С:1Т)×6 |
II группа (2С:1Т)×8 |
III группа (1С:1Т)×12 |
Эритроциты, ×1012/л |
3,14 ± 0,23 |
3,29±0,21 |
2,95±0,32 |
3,10±0,10 |
Лейкоциты, ×109/л |
38,34±1,1 |
39,13±2,1 |
37,76±2,9 |
36,08±2,3 |
Гемоглобин, г/л |
89,2±11,2 |
92,9±6,9 |
84,5±7,9 |
85,7±8,3 |
Следует отметить, что изучаемые нами морфологические показатели крови контрольной и опытных групп находились в пределах физиологической нормы.
Результаты исследований показали, что содержание эритроцитов и гемоглобина под влиянием прерывистого режима освещения используемого при выращивании цыплят-бройлеров I опытной группы существенно изменилось, в сторону повышения кислородной емкости крови и более интенсивном обмене веществ. Так, бройлеры данной группы по содержанию эритроцитов и гемоглобина превосходили контрольных сверстников соответственно – на 4,8 % и 4,1%. Наименьшая концентрация эритроцитов и гемоглобина отмечена у цыплят II опытной группы со световым режимом (2С:1Т)×8, при этом по их содержанию они уступали I опытной группе на 10,3 % и 9,0 %. соответственно
По содержанию лейкоцитов достоверных различий между контрольной и опытными группами установлено не было. Однако, необходимо отметить, что наблюдалась тенденция к увеличению лейкоцитов у цыплят I опытной группы – 39,13 1012/л, что незначительно выше, чем в контрольной, II и III опытных группах.
Использование различных световых режимов повлияло на изменение биохимических показателей крови цыплят.
Таблица 2. – Показатели минерального обмена цыплят-бройлеров в зависимости от световых режимов
Показатели |
Контрольная (23С:1Т) |
I группа (3С:1Т)×6 |
II группа (2С:1Т)×8 |
III группа (1С:1Т)×12 |
Кальций, ммоль/л |
4,62±0,58 |
4,89±0,33 |
4,41±0,79 |
4,35±0,81 |
Фосфор неорганический, ммоль/л |
2,11±0,09 |
2,20±0,17 |
1,98±0,31 |
1,89±0,23 |
По содержанию кальция и фосфора в сыворотке крови бройлеров I опытной группы превосходили остальные группы цыплят. Так концентрация кальция в сыворотке крови цыплят данной группы превышала показатель контроля – на 5,8%, II опытной группы – на 9,8 % и III опытной – на 11,0 %. Содержание фосфора у цыплят I опытной группы по сравнению с контролем было выше – на 4,3 %.
Интенсивность и уровень режимов освещения повлияло на содержание в крови цыплят общего белка и его фракций.
Так, в сыворотке крови 20-ти дневных цыплят контрольной группы было на 55,3% общего белка меньше чем в I опытной, на 76,1% - во II-й и на 22,9% в сравнении с III группой. Пониженное содержание общего белка в сыворотке крови выше названых групп свидетельствует о том, что как в первой так и во второй период выращивания цыплят использовался световой режим (2С:1Т)х8 и (1С:1Т) х12 при освещенности в 15 лк обладают более низким уровнем обменных процессов.
Во второй период выращивания наивысшее содержание общего белка отмечено у цыплят I опытной группы – 36,92 г/л, что соответственно больше на 3,2%, 10,5% и 24,4%, чем в контрольной, II и III опытных группах соответственно.
В конце выращивания достоверных отличий в содержании белка между группами установлено не было.
Концентрация альбумина и глобулина в сыворотке крови цыплят-бройлеров контрольной и опытных группах в начале и конце выращивания находится в пределах физиологической нормы. Достоверных различий между показателями не выявлено.
Во 2-ой период выращивания цыплята I опытной группы в возрасте 30 дней превосходили своих сверстников из контрольной, II и III опытных групп, по содержанию альбумина соответственно на 7,3 (Р<0,05), 6,2 и на 7,8%. В этот же период у них отмечена самая низкая концентрация глобулина по которой они достоверно уступали цыплятам-бройлерам контрольной группы – на 6,2 % (Р<0,01).
Известно, что глобулины a и b-фракций обеспечивают транспорт железа, каратиноидов, жирорастворимых витаминов, липидов, холестерина, высших жирных кислот и стероидных гормонов. Так, у бройлеров I опытной группы в начале выращивания концентрация a-глобулинов выше чем контрольной группе на 17,7% (Р<0,01). В середине и конце выращивания наблюдается обратная тенденция. У бройлеров контрольной группы содержание a-глобулина была достоверно выше на 6,3-15,6% по сравнению с I, II и III опытной группой.
γ-глобулины основные защитные белки организма. Фракция γ-глобулинов состоит из иммуноглобулинов, функционально представляющих собой антитела, обеспечивающие гуморальную иммунную защиту организма от инфекций и чужеродных веществ. Они содержатся в крови, слюне и других жидкостях. С их количеством и активностью связаны жизнестойкость, физиологическое состояние и продуктивность птицы.
Различия показателей по концентрации γ-глобулинов в крови бройлеров между опытными и контрольной группами не является достоверными. Однако к концу выращивания наблюдалась тенденция к увеличению концентрации иммуноглобулинов у цыплят I, II и III опытных групп и была выше, чем в контроле на 5,2, 0,6 и 13,3% соответственно. Иммуностимулирующие свойства можно связать со снижением стрессовой нагрузки на организм птицы и с оптимизацией обмена веществ. Это особенно важно при выращивании современных, высокоэффективных кроссов в условиях интенсивных технологий.
Выводы. Таким образом на основании полученных данных можно сделать вывод о том, что применение различных световых режимов не оказывает негативного влияния на организм цыплят бройлеров, а в первой опытной группе применение режима (3С:1Т)×6 позволило улучшить показатели обмена веществ.
Библиографический список
- Бедило, Н. М. Методы повышения эффективности выращивания бройлеров при использовании световых режимов основанных на биологических ритмах : дис. . д-ра. с.-х. наук / Н. М. Бедило; МСХА. Смоленск, 1983. -312 с.
- Заморский, И. И. Функциональная организация фотопериодической системы головного мозга / И. И. Заморский, В. П. Пишак // Успехи физиол. наук. 2003. -№ 4. Т. 34. – С. 37 – 53.
- Кавтарашвили, А. Разработка и использование прерывистых световых программ в яичном птицеводстве / А. Кавтарашвили // Главный зоотехник.2007.-№5.-С. 50-51.
- Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: Справочник / И. П. Кондрахин [и др.] под ред. Проф. И. П. Кондрахина. – М.: Колос. С, 2004. – 520 с.